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Teste de Diagnóstico Rápido

usando a tecnologia

lab-on-paper

Para o desenvolvimento do teste de diagnóstico rápido foi

necessário otimizar o volume e a concentração de antigénio

recombinante

Pf

HRP2 a adicionar à linha de teste, a dilui-

ção de anticorpo secundário (anti-IgG) a aplicar na linha de

controlo, assim como a quantidade (controlada pelo volume

de solução adicionado) de bionanoconjugados AuNP-MUA-

-anti-

Pf

HRP2 ou AuNP-CALNN-anti-

Pf

HRP2 a aplicar na

zona de deposição.

Aplicação dos bionanoconjugados noTDR

O volume de bionanoconjugados AuNP-MUA-anti-

Pf

HRP2

ou AuNP-CALNN-anti-

Pf

HRP2 a 12 nM variou entre 30 e

70 µl, de modo a determinar o volume necessário a ser apli-

cado na zona de deposição dos bionanoconjugados e a sua

capacidade de migração ao longo do teste. Observou-se que

60 µl é o volume ideal a ser aplicado para que os bionano-

conjugados migrem ao longo da tira de papel de filtro, e re-

conheçam o antigénio e o anticorpo secundário imobilizados

na linha de teste e de controlo, respetivamente.

Otimização da linha de teste

A concentração de antigénio recombinante

Pf

HRP2 foi ava-

liada num intervalo de 0,6 a 1,5 mg/mL. Verificou-se que

somente com a concentração mais alta, correspondente a

1,5 mg/mL é que foi possível detetar uma cor vermelha

visível na linha de teste. Este resultado indica que ocorreu

ligação entre o antigénio imobilizado na linha de teste e o

anticorpo anti-

Pf

HRP2 conjugado com as AuNP funciona-

lizadas (com CALNN ou MUA) que migraram ao longo da

tira de papel de filtro.

Também foi variado o volume de solução de antigénio re-

combinante

Pf

HRP2 a imobilizar na linha de teste num in-

tervalo de 2 a 6 µl. Os resultados obtidos mostraram que 2,5

µl é o volume ideal a ser aplicado, uma vez que volumes de

antigénio superiores a este tornam-se excessivos para a ca-

pacidade de absorção do papel de filtro na linha de

teste.As-

sim, verificou-se que o volume de 2,5 µl de antigénio a uma

concentração de 1,5 mg/mL são as condições favoráveis a

serem aplicadas de modo a que o antigénio seja detetado, tal

como ilustra a figura 6.

Otimização da linha de controlo

Na linha de controlo foram aplicados 2,5 µl de anticorpo

secundário (anti-IgG) numa gama de diluições até 1:100

para os bionanoconjugados AuNP-MUA-anti-

Pf

HRP2 ou

1:200 no caso de bionanoconjugados AuNP-CALNN-anti-

-

Pf

HRP2. O volume aplicado de 2,5 µl foi selecionado de

acordo com os resultados obtidos na linha de teste.

Na presença de bionanoconjugados AuNP-CALNN-anti-

-

Pf

HRP2, a linha de controlo apresentou uma cor vermelha

visível até uma diluição de anti-IgG de 1:90. A partir desta

diluição, a linha de controlo ainda é detetada, embora com

menor nitidez, deixando de o ser em presença de diluições

superiores (1:200), tal como ilustrado na figura 7 A. Nos

bionanoconjugados AuNP-MUA-anti-

Pf

HRP2 uma cor ver-

melha visível está presente até à diluição de 1:45, não sendo

detetáveis diluições de anticorpo secundário superiores (Fi-

gura 7 B).

A partir dos resultados obtidos foi selecionada para o desen-

volvimento do TDR a diluição de anti-IgG de 1:90 e 1:45

em presença dos bionanoconjugados AuNP-CALNN-anti-

-

Pf

HRP2 e AuNP-MUA-anti-

Pf

HRP2, respetivamente.

Uma maior diluição foi conseguida na presença das nano-

partículas funcionalizadas com CALNN comparativamente

Figura 6

Deteção do antigénio recombinante

P

fHRP2 em tira

de papel de filtro. Aplicação de 2,5 µl de antigénio a 1,5 mg/

mL e 60 µl de bionanoconjugados AuNP-CALNN-anti-

Pf

HRP2

a 12 nM.

Figura 7

Diluições de anticorpo secundário (anti-IgG) aplicadas na linha de controlo das

tiras de papel de filtro. (A) Diluições de anti-IgG aplicadas na linha de controlo em presen-

ça de 60 µl de bionanoconjugados AuNP-CALNN-anti-

Pf

HRP2 a 12 nM; (B) Diluições de

anti-IgG aplicadas na linha de controlo em presença de 60 µl de bionanoconjugados AuNP-

-MUA-anti-

Pf

HRP2 a 12 nM.

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